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免疫印跡技術

免疫印跡技術概述

免疫印跡法是將蛋白質轉移到膜上,然后利用抗體進行檢測。對已知表達蛋白,可用相應抗體作為一抗進行檢測,對新基因的表達產物,可通過融合部分的抗體檢測, 具有分析容量大、敏感度高、特異性強等優(yōu)點,是檢測蛋白質特性、表達與分布的一種最常用的方法,如組織抗原的定性定量檢測、多肽分子的質量測定及病毒的抗體或抗原檢測等。 

免疫印跡技術正常值

  • 無特殊顯色反應。 

免疫印跡技術臨床意義

  • 異常結果:有特殊顯色反應,證明有某種蛋白質存在。
    需要檢查人群:檢查某種蛋白。 

免疫印跡技術檢查方法

  • (一)蛋白質樣品獲得:細菌誘導表達后,可通過電泳上樣緩沖液直接裂解細胞,真核細胞加勻漿緩沖液,機械或超聲波室溫勻漿0.5-1min。然后4℃,13,000g離心15min。取上清液作為樣品。
    (二)電泳:制備電泳凝膠,進行SDS-PAGE。
    (三)轉移:(半干式轉移)
    1、電泳結束后將膠條割至合適大小,用轉膜緩沖液平衡,5min×3次。
    2、膜處理:預先裁好與膠條同樣大小的濾紙和NC膜,浸入轉膜緩沖液中10min。
    3、轉膜:轉膜裝置從下至上依次按陽極碳板、24層濾紙、NC膜、凝膠、24層濾紙、陰極碳板的順序放好,濾紙、凝膠、NC膜精確對齊,每一步去除氣泡,上壓500g重物,將碳板上多余的液體吸干。接通電源,恒流1mA/cm2,轉移1.5hr。轉移結束后,斷開電源將膜取出,割取待測膜條做免疫印跡。將有蛋白標準的條帶染色,放入膜染色液中50s后,在50%甲醇中多次脫色,至背景清晰,然后用雙蒸水洗,風干夾于兩層濾紙中保存,留與顯色結果作對比。
    (四)免疫反應:
    1、用0.01M PBS洗膜,5min ×3次。
    2、加入包被液,平穩(wěn)搖動,室溫2hr。
    3、棄包被液,用0.01M PBS洗膜,5min×3次。
    4、加入一抗(按合適稀釋比例用0.01M PBS稀釋,液體必須覆蓋膜的全部),4℃ 放置12hr以上。陰性對照,以1%BSA取代一抗,其余步驟與實驗組相同。
    5、棄一抗和1%BSA,用0.01M PBS分別洗膜,5min×4次。
    6、加入辣根過氧化物酶偶聯的二抗(按合適稀釋比例用0.01M PBS稀釋),平穩(wěn)搖動,室溫2hr。
    7、棄二抗,用0.01M PBS洗膜,5min×4次。
    8、加入顯色液,避光顯色至出現條帶時放入雙蒸水中終止反應。 

免疫印跡技術注意事項

  • 檢查時禁忌:無。
    檢查時禁忌:
    1、一抗、二抗的稀釋度、作用時間和溫度對不同的蛋白要經過預實驗確定最佳條件。
    2、顯色液必須新鮮配置使用,最后加入H2O2。
    3、DAB有致癌的潛在可能,操作時要小心仔細。 

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